Питательная среда для выделения и культивирования гонококка. Набор реагентов «Питательная среда для выделения гонококка сухая» (ГНК агар) Свг набор для выделения и культивирования гонококков

Neisseria gonorrhoeae входят в семейство Neisseriaceae, род Neisseria. Гонококки обнаружены Нейссером в 1879 г. и в честь его названо все семейство.

Морфология . Гонококки - это диплококки, состоящие из двух бобовидных кокков, лежащих вогнутыми сторонами друг к другу (напоминают кофейные зерна). Размер гонококков 1,2-1,3 × 0,7-0,8 мкм. Они полиморфны, наряду с крупными встречаются очень мелкие, неправильной формы L-формы бактерий. Гонококки неподвижны, спор не имеют. В патологическом материале (гное) обнаруживают капсулообразное вещество. Грамотрицательны. Под влиянием лекарственных и других веществ быстро изменяются: появляются грамположительные формы. В патологическом материале располагаются внутриклеточно (в лейкоците), но могут быть вне клетки. Могут находиться в виде отдельных кокков (см. рис. 4).

Культивирование . Гонококки - аэробы. Очень требовательны к питательным средам. Растут на средах, содержащих нативный белок (человеческий) - кровь, сыворотку, при температуре 37° С и рН среды 7,2-7,4. Среды должны быть свежеприготовленными и влажными. Посев следует производить сразу после взятия материала. На сывороточной среде гонококки образуют мелкие колонии 1-2 мм, прозрачные, блестящие с ровными краями, напоминающие капельки росы. На кровяной среде гемолиза не дают. В сывороточном бульоне они дают слабое помутнение и пленку, которая оседает на дно пробирки. При скудном росте через 24 ч посевы оставляют в термостате на вторые сутки.

Ферментативные свойства . Сахаролитические свойства слабо выражены. Гонококки расщепляют только один сахар - глюкозу с образованием кислоты. Протеолитическими свойствами не обладают.

Токсинообразование . В клеточной стенке гонококков имеется токсическая субстанция - липополисахарид (мало изучен).

Антигенная структура . Антигенная структура неоднородна и легко изменяется под влиянием факторов внешней среды. Общепринятого деления гонококков на серовары и серотипы пока нет.

Устойчивость к факторам окружающей среды . Во внешней среде гонококки мало устойчивы. При температуре 56-60° С они погибают. При температуре 40° С их жизнеспособность резко снижается. Низкие температуры и высушивание их быстро губят. Но в гное они сохраняются до 24 ч. Дезинфицирующие растворы - 1% раствор фенола, сулема 1:1000 убивают гонококки в течение нескольких минут. Особенно гонококки чувствительны к солям серебра - 1% раствор серебра нитрата губит их сразу. УФ-лучи убивают их в течение нескольких минут.

Восприимчивость животных . Животные не чувствительны к гонококку. Однако внутрибрюшинное введение белым мышам гонококкового токсина вызывает их гибель.

Источники инфекции . Больной гонореей человек.

Пути передачи . Контактно-бытовой (половой), реже через зараженные предметы (полотенце, губки и др.).

Заболевания у человека . Гонорея и бленнорея.

Патогенез . Естественным хозяином гонококков является больной человек. Гонококки проникают через слизистые оболочки уретры (у женщин - уретры и шейки матки). Фактором патогенности гонококков является наличие у них пилей, которые, соединяясь с микроворсинками цилиндрического эпителия, способствуют проникновению гонококка внутрь клетки эпителия, обусловливая в слизистой оболочке острый воспалительный процесс.

Клинически гонорея проявляется болями при мочеиспускании, выделениями гноя из уретры и влагалища. Заболевание протекает остро, но иногда переходит в хроническую форму. Гонококки могут вызвать гонорейный конъюнктивит - бленнорею (гнойное воспаление слизистой оболочки глаз у новорожденных). Гонококки редко проникают из уретры в другие органы, но иногда они могут быть причиной артритов, эндокардитов и т. д.

Иммунитет . Естественной резистентности к гонококкам нет. Перенесенное заболевание также не создает иммунитета. Наблюдающийся фагоцитоз носит незавершенный характер.

Профилактика . Санитарное просвещение. Повышение культурно-гигиенического уровня. Специфической профилактики нет. Для профилактики бленнореи детям сразу после рождения обязательно вводят в конъюнктивальный мешок 1-2 капли 30% раствора альбуцида.

Лечение . Антибиотики (пенициллин, бициллин, стрептомицин и др.). Применяют также сульфаниламидные препараты. При хронической форме используют гонококковую вакцину.

1. Опишите морфологические свойства гонококков.

2. Каковы ферментативная активность и токсинообразование гонококков?

3. Какова устойчивость гонококков. К какому препарату гонококки особенно чувствительны?

4. Какие заболевания вызывают гонококки и их патогенез.

Цель исследования: выявление гонококков и противогонококковых антител.

Материал для исследования

1. Отделяемое слизистой оболочки уретры у мужчин.

2. Отделяемое слизистой оболочки уретры и шейки матки у женщин.

3. Гнойные выделения из глаз.

4. Кровь для получения сыворотки.

Примечание. Для бактериоскопического и бактериологического исследования материал берут: 1) до начала лечения антибиотиками: 2) не ранее чем через 10 дней после окончания лечения антибиотиками; 3) не ранее чем через 2 ч после последнего мочеиспускания; 4) не ранее чем через 2 ч после спринцевания.

Основные методы исследования

1. Микроскопический (главным образом используется при острых формах).

2. Микробиологический.

3. Серологический.

Ход исследования

Второй день исследования

Вынимают посевы из термостата и просматривают их. Изучают колонии. Делают мазки. При наличии подозрительных грамотрицательных диплококков колонии пересевают на скошенную среду в пробирках (среда должна быть свежеприготовленной и содержать достаточное количество конденсата) и ставят пробу на оксидазу. Для этого пипеткой на колонию наносят каплю 1% раствора диметилпарафенилендиамина, колонии изменяют цвет от темно-коричневого до черного.

Третий день исследования

Вынимают посевы из термостата, делают мазки со скошенного агара, окрашивают по Граму и микроскопируют. Засевают на среды Гисса (лактозу, глюкозу, маннит и мальтозу). Эти углеводы должны содержать 30% сыворотки крови. Засеянные пробирки ставят в термостат.

Четвертый день исследования

Вынимают пробирки из термостата, при отсутствии роста оставляют их в термостате еще на 1-2 дня. При наличии роста учитывают результаты (табл. 28).

Серологическая диагностика

Третья неделя заболевания. При хроническом течении заболевания и в сомнительных случаях ставят РСК с сывороткой больного (см. главу 12). В качестве антигена используют убитую культуру гонококков, которую готовят в производственных условиях. Можно применить реакцию непрямой гемагглютинации (см. главу 12).

Контрольные вопросы

1. Какой материал служит для выявления гонококков и каким способом его получают?

2. Через сколько времени после мочеиспускания (или спринцевания у женщин) можно брать материал для исследования?

3. Какой метод исследования является основным при острой форме и какой - при хронической форме гонореи?

4. Когда и какую серологическую реакцию ставят при подозрении на гонорею?

5. От каких микроорганизмов необходимо дифференцировать гонококки?

Получите у преподавателя препарат. Изучите его и зарисуйте гонококки, расположенные внутри лейкоцита и вне его при окраске по Граму.

Питательные среды

Желточная среда . К 100 мл МПА из кроличьего мяса добавляют 15 мл желтка (свежего куриного яйца), 6 мл индикатора фенолового красного, 1,5 мл сахара, растворенного в 1 мл стерильной дистиллированной воды.

Питательная среда асцит-агар . К фильтрату бульона, приготовленного из кроличьего мяса, добавляют 2% агар, 1% пептон и 0,5% хлорид натрия. Нагревают до растворения агара, устанавливают рН 7,4-7,5, подщелачивают 20% гидроксидом натрия. Среду доводят до кипения, фильтруют, разливают в стерильные флаконы и стерилизуют в автоклаве 15 мин при 115° С.

Рецепты безасцитных питательных сред (МПА рН 7,4-7,5) .

1) мясной воды из кроличьего мяса или бычьих сердец - 100 мл

гидролизата казеина - 2 мл

дрожжевого аутолизата - 2 мл

сыворотки крови крупного рогатого скота - 20 мл

2) мясной воды из кроличьего мяса или бычьих сердец - 100 мл

5% раствор гемогидролизата - 2 мл

дрожжевого аутолизата - 2 мл

сыворотки рогатого скота - 20 мл

3) мясной воды из кроличьего мяса или бычьих сердец - 100 мл

желтка куриного яйца - 10 мл

сыворотки крови рогатого скота - 20 мл

Рост гонококков на этих средах обильный. Колонии гонококка могут быть выявлены с помощью пробы на оксидазу, при которой они окрашиваются в красный цвет, переходящий в черный.

Этот агар с добавлением крови, гемоглобина или других добавок рекомендуют для селективного выделения гонококков.

** Состав выверен и доведен до соответствия необходимым параметрам

Размешать 7,2 г порошка в 100 мл дистиллированной воды, чтобы приготовить среду двойной концентрации. Подогреть до кипения для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин. Остудить до 50°С и асептично добавить приготовленные отдельно 100 мл 2%-ного стерильного раствора гемоглобина (FD022 ) и добавку GC (FD021 ). Тщательно перемешать и разлить в чашки Петри. Для придания селективных свойств в среду можно добавить антибиотики, входящие в следующие добавки: VNC (FD023 ), VCNT (FD024 ), Linco T (FD026 ), Vanco (FD028 ).

Для приготовления шоколадного агара готовят среду обычной концентрации, размешав 3,6 г порошка в 100 мл дистиллированной воды. Стерилизуют, добавляют до 5% (об/об) стерильную дефибринированную кровь и прогревают среду при 80°С в течение 10 мин.

Данный агар с добавлением крови или гемоглобина и других добавок рекомендуют для селективного выделения и культивирования таких прихотливых микроорганизмов, как гонококки и гемофильные бактерии. Johnston разработал шоколадный агар, на котором можно было в течение 24 ч получить рост Neisseria gonorrhoeae (1). Позже другие авторы (2) усовершенствовали среду, введя в ее состав гемоглобин.

Агар содержит специальный пептон – источник питательных веществ для микроорганизмов. Крахмал позволяет нейтрализовать образуемые нейссериями токсические вещества, а фосфаты противодействуют сдвигу рН в результате образования аминов, что также может сказаться на росте и жизнеспособности микроорганизмов. Гемоглобин служит источником фактора Х для гемофильных бактерий. Другая добавка обогащает среду фактором V (НАД, никонинамидадениндинуклеотид), необходимым для гемофильной палочки, а также аминокислотами, витаминами, ионами железа и т.п., что стимулирует рост патогенных нейссерий.

Не применяйте тампоны из хлопка для сбора материала. Посев осуществляйте сразу после отбора материала. Его надо сделать так, чтобы были зоны густого и редкого роста. Посев инкубируют при 37°С в атмосфере 5-10% углекислоты и 70% влажности. Все подозрительные колонии надо проверить в биохимических и/или серологических тестах.

Гомогенный сыпучий светло-желтый порошок.

Образуется среда, соответствующая по плотности 1,0%-ному агаровому гелю.

Основа среды имеет светло-желтую окраску, прозрачна или слегка опалесцирует. После добавления гемоглобина среда становится шоколадно-коричневой и непрозрачной, если в чашках Петри формируется гель.

При 25°С водный раствор (3,6% вес/об) имеет рН 7,2 ± 0,2.

Ростовые характеристики референс-штамма через 40-48 ч при 35-37°С на шоколадном агаре, приготовленном на этой основе, в присутствии в атмосфере 5-10% углекислоты и 70% влажности.

Цена: по запросу

Вы можете добавить товар в корзину, указав количество

Производитель: ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии им.Пастера

Страна: Россия

Ед. изм.: набор

Вид упаковки: картонная коробка

Артикул:

Описание

Набор реагентов для выделения гонококков культуральным методом при исследовании клинического материала от больных с воспалительными заболеваниями мочеполовой системы. Рассчитан на приготовление 110 мл плотной питательной среды, готовой к применению

Компоненты набора СВГ обеспечивают оптимальные условия для роста Neisseria gonorrhoeae до количеств, необходимых для формирования видимых колоний, а селективная добавка подавляет рост простейших, грибов и большинства других представителей сопутствующей флоры, потенциально содержащихся в образце.
Методика включает несколько этапов, каждый из которых должен проходить в соответствии с определёнными требованиями. По завершении всех стадий диагностики заболевания с помощью метода культивирования возбудителя на гонококковой среде производится визуальный учёт результатов через 18-24 часа, 48 и 72 часа. Выявляют типичные для гонококков светло-серые, слегка мутноватые круглые колонии. При острой гонорее отмечается рост гонококка в течение первых суток, при хронической - до 72 часов. Результат считают отрицательным при отсустствии роста после 7 суток инкубирования

Состав набора
1. Основа питательной среды, сухая - 4,1г х 1 флакон;
агар, дрожжевой экстракт, пептон, крахмал, соли;
внешний вид: гигроскопичный порошок светло-желтого цвета;
2. Селективная добавка, лиофилизированная - 1 флакон;
коэнзимы, лизат эритроцитов, противогрибковые препараты, антибиотики, сахара;
внешний вид: лиофилизат розовато-бежевого цвета.
Готовая среда прозрачная светло-желтого цвета, с легкой опалесценцией, допускается наличие незначительного осадка.
pH 7.2- 7.4
Форма выпуска: в картонной коробке вместе с инструкцией по применению.
Условия хранения: при температуре +2...8°С не более 12 месяцев, допустимо хранение при температуре до +25°С не более 2 недель.
Готовая питательная среда может храниться в пробирках или чашках Петри не более 7 суток.
Зарегистрировано в Росздравнадзор

Использование: микробиология, диагностика гонореи, питательная среда для выделения и культивирования гонококка. Сущность изобретения: питательная среда содержит в качестве питательной основы панкреатический гидролизат рыбной муки и солянокислотный гидролизат казеина, в качестве стимулятора роста и источника витаминов - автолизат пекарных или пивных дрожжей, стимулятор роста гемофильных микроорганизмов. Среда дополнительно содержит глюкозу, агар микробиологический, полимиксина-В сульфат, линкомицина гидрохлорид и воду дистиллированную. Среда обеспечивает рост гонококка музейных штаммов и из материала от больных гонореей, сохраняя типичную морфологию микроорганизма, что способствует широкому применению в практическом здравоохранении при диагностике и лечении венерических заболеваний. 3 табл.

Изобретение относится к области медицинской микробиологии и может быть использовано при диагностике гонореи. Ведущими зарубежными фирмами ("Oxoid", "Gibco", "BRL" и др.) выпускаются питательные среды для культивирования гонококка на основе мясных переваров и ферментолизатов с добавлением стерильной нативной крови Из отечественных препаратов известны: питательная среда "Аргинин-агар", диагностическая, сухая, производства НПО "Питательные среды" г. Махачкала которая состоит из следующих компонентов, г: пептон 8,0-12,0; аргинин 0,07-0,3; цистин 0,007-0,03; глутаминовая кислота 1,0-1,8; ЭКД 4,0-7,0; тиамин бромид 0,002-0,007; нитрат железа 0,002-0,01; калий хлористый 0,07-0,2; натрий хлористый 5,0-8,0; хлористый аммоний 0,9-2,0; магний сернокислый 0,4-0,9; глюкоза 4,0-7,0; крахмал 0,5-2,0; трис-буфер 1,0-2,5; агар 13-17,0; бычья сыворотка 153,0-255,0; полимиксина-М сульфат 15000-25000 Ед; линкомицина гидрохлорид 0,001-0,003; вода дистиллированная до 1 л. Недостатком этой среды является: низкая чувствительность, нестабильность результатов по интенсивности роста гонококка. Лиофильновысушенная среда для выделения гонококка (производства НИИ ВСа, г. С.-Петербург) состоящая из основы среды и добавки при следующем соотношении компонентов, г; приведена в таблице 1. Недостатком этой среды является: нестабильность результатов по интенсивности роста гонококка и чувствительности. На практике же, в основном, применяются лабораторно приготовленные безасцитные среды из экстрактов свежего мяса кроликов и свежих бычьих сердец с добавлением пептона и 20% сыворотки крови крупного рогатого скота или стерильной нативной крови. Отсутствие необходимого количества отечественных питательных сред для диагностики гонореи, а также качество их вызывает нарекания со стороны практической службы здравоохранения. Задачей изобретения является создание сухой питательной среды, обеспечивающей стабильность результатов по интенсивности роста и повышенную чувствительность, не уступающей коммерческим средам для диагностики гонококка, и использовать для ее производства непищевые продукты. Поставленная задача решается сбалансированностью компонентного состава среды, содержащей питательную белковую основу, автолизат пекарных или пивных дрожжей, агар, хлористый натрий, ингибиторы посторонней микрофлоры линкомицина гидрохлорид и полимиксина-В сульфат, в качестве питательной основы она содержит панкреатический гидролизат рыбной кормовой муки и солянокислотный гидролизат казеина, кроме того она дополнительно содержит стимулятор роста гемофильных микроорганизмов (ферментативный гидролизат черного альбумина), глюкозу, для повышения стабильности результатов при обследовании больных хронической гонореей возможна добавка к среде сыворотки крови крупного рогатого скота (5-10)% при следующем содержании компонентов, г/л: панкреатический гидролизат рыбной муки 22,0-28,0 кислотный гидролизат казеина 2,8-3,2 автолизат пекарных или пивных дрожжей 0,8-1,2 стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 2,0-10,0 глюкоза 9,0-11,0 натрий хлористый 2,9-3,1 агар микробиологический 12,0-15,0 полимиксина-В сульфат 15000-25000 Ед
линкомицина гидрохлорид 0,001-0,003
вода дистиллированная до 1 л
pH 7,3+0,2
Количественное соотношение компонентов питательной среды и ее рН обеспечивают повышенный уровень интенсивности роста гонококка и чувствительности среды. Питательную среду готовят следующим образом: навески основных ингредиентов вносят в колбу с дистиллированной водой. Среду тщательно перемешивают и, закрыв колбу ватно-марлевой пробкой, стерилизуют при (115-119) o C в течение 30 мин. затем охлаждают до температуры (45-50) o C и стерильно, предварительно растворив в стерильном физ. растворе, вносят навески полимиксина-В сульфата и линкомицина гидрохлорида. Среду перемешивают и разливают в стерильные чашки Петри. Для биологического контроля питательных сред использовали культуру Neisseria gonorrhoeae музейных штаммов и материал от больных гонореей. Все посевы культивировали при температуре (37+0,5) o C в атмосфере 10% СО 2 и повышенной влажности в течение 24-48 час: данные в таблице 1. Пример 1. Проверка предлагаемой среды производилась посевом штаммов Neisseria gonorrhoeae и на клиническом материале на питательную среду следующего состава, г:
панкреатический гидролизат рыбной муки 22,0
автолизат пекарных дрожжей 0,8
солянокислотный гидролизат казеина 2,8
стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 2,0
глюкоза 9,0
натрий хлористый 2,9
агар микробиологический 12,0
полимиксина-В сульфат 15000 Ед
линкомицина гидрохлорид 0,001
вода дистиллированная до 1 л
рН 7,3+0,2
Учет результатов проводили через 24-48 час культивирования. Пример 2. Проверка предлагаемой среды производилась посевом штаммов Neisseria gonorrhoeae и на клиническом материале на питательную среду с оптимальным содержанием компонентов следующего состава, г:
панкреатический гидролизат рыбной муки 25,0
автолизат пекарных дрожжей 1,0
солянокислотный гидролизат казеина 3,0
стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 5,0
глюкоза 10,0
натрий хлористый 3,0
агар микробиологический 13,0
полимиксина-В сульфат 20000 Ед
линкомицина гидрохлорид 0,002
вода дистиллированная до 1 л
pH 7,3+0,2
Учет результатов проводили через 24-48 час культивирования. Пример 3. Проверка пpедлагаемой среды производилась посевом штаммов Neisseria gonorrhoeae и на клиническом материале на питательную среду с максимальным содержанием компонентов следующего состава, г:
панкреатический гидролизат рыбной муки 28,0
автолизат пекарных дрожжей 1,2
солянокислотный гидролизат казеина 3,2
стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 10,0
глюкоза 11,0
натрий хлористый 3,1
агар микробиологический 15,0
полимиксина-В сульфат 25000 Ед
линкомицина гидрохлорид 0,003
вода дистиллированная до 1 л
pH 7,3+0,2
Учет результатов проводили через 24-48 час культивирования. Пример 4. Проверка предлагаемой среды производилась посевом штаммов Neisseria gonorrhoeae и на клиническом материале на питательную среду с нарушением количественного соотношения компонентов следующего состава, г:
панкреатический гидролизат рыбной муки 31,0
автолизат пекарных дрожжей 1,4
солянокислотный гидролизат казеина 3,4
стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 15,0
глюкоза 13,0
натрий хлористый 3,5
агар микробиологический 20,0
полимиксина-В сульфат 30000 Ед
вода дистиллированная до 1 л
pH 7,3+0,2
Учет результатов проводили через 24-48 час культивирования. Пример 5. Проверка предлагаемой среды производилась посевом штаммов Neisseria gonorrhoeae и на клиническом материале на питательную среду с нарушением количественного соотношения компонентов следующего состава, г:
панкреатический гидролизат рыбной муки 18,0
автолизат пекарных дрожжей 0,5
солянокислотный гидролизат казеина 2,5
стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 0,5
глюкоза 5,0
натрий хлористый 2,5
агар микробиологический 10,0
полимиксина-В сульфат 10000 Ед
линкомицина гидрохлорид 0,005
вода дистиллированная до 1 л
pH 7,3+0,2
Учет результатов проводили через 24-48 час культивирования. В таблице 2 дана сравнительная характеристика роста гонококков из клинического материала и музейных штаммов на предлагаемой и известных средах через 24-48 ч роста. Морфология колоний и окрашенных мазков на всех испытуемых средах идентична типичная для гонококка. Из таблицы 2 видно, что предлагаемая среда по интенсивности роста гонококка и чувствительности превосходит коммерческие среды. Нарушение количественного соотношения компонентов среды ведет к резкому ухудшению микробиологических показателей качества предложенной среды. Предлагаемая среда позволяет поддерживать жизнеспособность штаммов Nisseria gonorrhoeae (как свежевыделенных от больных, так и музейных) при пассировании в течение 9 месяцев. В таблице 3 представлены данные жизнеспособности культуры Neisseria gonorrhoeae при культивировании и хранении на плотных средах,
Из таблицы 3 видно, что предлагаемая питательная среда пригодна для диагностических целей при выявлении больных острой и хронической гонореей, а также при получении биомассы Neisseria gonorrhoeae для создания гоновакцин. Источники информации
1. Handbook Culture Media (1982)
2. The manual of microbiological culture media (Gibco BRL 1988)
3. The Oxoid manual of culture media, ingredients and other laboratory services. (Oxoid Limited 1979)
4. Manual of BBL produkts and laboratoru procedures. 1991. 5. Авт. свидетельство N 1451167 г.р. Гаджиева и др. "Питательная среда для выделения гонококков". 6. ФС 42-146 ВС-88 Питательная сpеда для выделения гонококка, сухая.

Формула изобретения

1 Питательная среда для выделения и культивирования гонококка, содержащая питательную основу, автолизат пекарных или пивных дрожжей, агар микробиологический, натрий хлористый, ингибитор посторонней микрофлоры и воду дистиллированную, отличающаяся тем, что в качестве питательной основы она содержит панкреатический гидролизат рыбной муки и солянокислотный гидролизат казеина, дополнительно содержит стимулятор роста гемофильных микроорганизмов, глюкозу, а в качестве ингибитора посторонней микрофлоры полимиксина-В сульфат и линкомицина гидрохлорид при следующем соотношении компонентов, г/л:3 Панкреатический гидролизат рыбной муки7 22 283 Солянокислотный гидролизат казеина7 2,8 3,23 Автолизат пекарных или пивных дрожжей7 0,8 1,23 Стимулятор роста гемофильных микроорганизмов7 2 103 Глюкоза7 9 113 Натрий хлористый7 2,9 3,13 Агар микробиологический7 12 - 153 Полимиксина-В сульфат, Ед7 15000 250003 Линкомицина гидрохлорид7 0,001 0,0033 Вода дистиллированная7 До 1 л3 pH7 7,3 + 0,2

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицинской биотехнологии и касается получения менингококкового адгезина препарата бактериального происхождения, используемого, например, для определения степени адгезии менингококков при их взаимодействии с клетками макроорганизма